20250217-20250223

20250217-20250223
2025.2.17
  • 上午组会
  • cck8测得K562细胞48hr
2025.2.18
  • 计算作图
  • SET-2cck8给药LPH-95;LPH-50,测48hr
  • 2.20测得结果
  • NP小论文作图,查重后降重
  • 完成FIG.1
  • 测得K562的LPH-95在72hr的cck8
  • 后续需计算并作图
2025.2.19
  • 质粒放到四度冰箱,下午16点继续放到100ml体系里扩增
  • 沈老师组样品清单交接
  • NP小论文作图
  • set-2细胞铺板*5,HEL细胞传代,K562细胞继续培养
  • cck8测得结果
2025.2.20
  • 配置母液
1. 从100 mM母液稀释到50 µM
  • 目标浓度:50 µM
  • 母液浓度:100 mM = 10mM
  • 目标体积:2.4 mL
稀释步骤:
  • 取1.2 µL的100 mM母液,加入2398.8 µL的稀释液(如生理盐水),得到2.4 mL的50 µM溶液。
2. 从50 µM稀释到5 µM
  • 目标浓度:5 µM
  • 母液浓度:50 µM
  • 目标体积:2.4 mL
所需母液体积:
所需母液体积=2.4 mL10=0.24 mL=240 μL所需母液体积=102.4mL=0.24mL=240μL
稀释步骤:
  • 取240 µL的50 µM溶液,加入2160 µL的稀释液,得到2.4 mL的5 µM溶液。
3. 从5 µM稀释到0.5 µM
  • 目标浓度:0.5 µM
  • 母液浓度:5 µM
  • 目标体积:2.4 mL
所需母液体积=2.4 mL10=0.24 mL=240 μL所需母液体积=102.4mL=0.24mL=240μL
稀释步骤:
  • 取240 µL的5 µM溶液,加入2160 µL的稀释液,得到2.4 mL的0.5 µM溶液。
最终方案
  • 50 µM溶液:
    • 取1.2 µL的100 mM母液 + 2398.8 µL稀释液 → 2.4 mL的50 µM溶液
  • 5 µM溶液:
    • 取240 µL的50 µM溶液 + 2160 µL稀释液 → 2.4 mL的5 µM溶液
  • 0.5 µM溶液:
    • 取240 µL的5 µM溶液 + 2160 µL稀释液 → 2.4 mL的0.5 µM溶液
  • 细胞冻存:细胞放坏了,直接扔掉
  • 细胞传代 HEL SET-2 K562 A549 H23 H1299
  • 纯化蛋白-诱导表达
2025.2.21
  • 复苏UKE1悬浮细胞(天津寄出)
  • 回复审稿意见
  • 蛋白质纯化:离心-超声裂解-过夜过柱
2025.2.22
  • 处理细胞:HEL传代,K562传代,SET-2继续培养
  • 蛋白质纯化:
  • 用5ml预冷的 wash buffer( 50 mMNH PO300 mMNaC1 20 mM imidazole、1mMPMSF, pH8.0) 洗涤 N-NTA 柱填充物·1000 rpm,5min/次,除去非特异结合的蛋白。反复洗8-9次。
  • NANO2000 测A280,直至吸光度接近0。
  • 用预冷的Elution buffer(50 mM NaH PO:300 mMNaC1 250 mM imidazole 1 mM PMSF,30%甘油,5mMDTTpH8.0)。5m/次,洗4-6次,直至蛋白检测液变浅。
  • 标注好洗脱次数(E1,E2或E3),液氮中速冻后存于-80℃。
  • 采用 SDS-PAGE的方法鉴定重组蛋白的大小。
  • 在N-NTA梯度洗脱组分即纯化后的重组蛋白加入同等体积的2xSDS凝胶加样缓冲液(100 mM Tris-HCI (pH6.8),200 mM DTL.4% SDS,20%甘油2mM钒酸钠,0.2%溴酚蓝),在沸水浴中加热10min后,于4℃ 12000xg离心10分钟.取上清液进行SDS-PAGE电泳,SDS-PAGE胶的浓度为10%。
  • 电泳结束后,加入考马斯亮蓝R-250染色,观察蛋白茶带,与Marker对照。